1. В состав жидкости Буэна входит
1) соляная кислота;
2) хлороформ;
3) пикриновая кислота;+
4) метанол.
2. В состав жидкости Карнуа входит
1) формальдегид;
2) ледяная уксусная кислота;+
3) пикриновая кислота;
4) соляная кислота.
3. Верная кислотность (pH) фиксатора
1) 5,35-5,45;
2) 7,35-7,45;+
3) 4,35-4,45;
4) 9,35-9,45.
4. Время, необходимое при переносе материала в фиксатор после взятия
1) 2 часа;
2) 1 час;
3) 40 минут;
4) 20 минут.+
5. К аутолизу приводит
1) неполная или недостаточная фиксация;+
2) фиксация при комнатной температуре 24 часа;
3) формалиновый пигмент;
4) применение 10% нейтрального забуференного формалина.
6. К простым фиксаторам относят
1) жидкость Карнуа;
2) формалин;+
3) жидкость Буэна;
4) цинк-формалин.
7. К сложным фиксаторам относят
1) сулема;
2) спиртовой Буэн;+
3) ацетон;
4) спирт.
8. К этапу первичной фиксации входит
1) заливка в парафин биоматериала;
2) вырезка биоматериала;
3) проводка биоматериала;
4) транспортировка биоматериала.+
9. Какие процессы происходят при воздействии химического метода фиксации биоматериала?
1) аутолиз;
2) митоз;
3) мейоз;
4) коагуляция белков.+
10. Метод фиксации биоматериала, применяемый для исследования срочной интраоперационной биопсии
1) метод заморозки;+
2) термический метод;
3) физический метод;
4) химический метод.
11. Минимальные сроки доставки биоматериала в лабораторию
1) 72 часа;
2) 48 часов;
3) 24 часа;+
4) 96 часов.
12. Оптимальная толщина кусочков
1) 1 см;
2) 2 см;
3) 5 мм;
4) 2-3 мм.+
13. Оптимальное время вторичной фиксации после вырезки биоматериала
1) 4 часа;
2) 24 часа;+
3) 6 часов;
4) 12 часов.
14. Оптимальное время фиксации при комнатной температуре
1) 8 часов;
2) 24 часа;+
3) 18 часов;
4) 10 часов.
15. Оптимальное время фиксации при температуре +37℃
1) 1 час;
2) 10 часов;
3) 8 часов;
4) 18 часов.+
16. Оптимальное соотношение ткань: фиксатор
1) 1:5;
2) 1:10;
3) 1:20;+
4) 1:2.
17. Оседающий белый осадок при охлаждении формалина является
1) формолом;
2) параформальдегидом;+
3) метанолом;
4) формальдегидом.
18. Основная цель фиксации биоматериала
1) сохранение структуры клетки;+
2) пропитка ткани парафином;
3) обезвоживание ткани;
4) окраска ядер и цитоплазмы.
19. Правило заполнения кассеты
1) не более, чем на 85%;
2) не более, чем на 75%;+
3) на 100%;
4) не более, чем на 95%.
20. Применение кислого формалина приводит к
1) неравномерному окрашиванию ядер;
2) формалиновому пигменту;+
3) складкам и трещинам в срезах;
4) аутолизу.
21. Применение термического метода фиксации
1) для иммунногистохимических исследований;
2) для гистохимических исследований;
3) для стандартных методов исследований;
4) для мазков и отпечатков органов.+
22. Процесс, являющийся необратимым
1) заливка;
2) фиксация;+
3) окраска;
4) микротомия.
23. Скорость проникновения фиксатора в ткань
1) 1 мм/час;
2) 4 мм/час;
3) 1 см/час;+
4) 5 мм/час.
24. Сроком фиксации биоматериала в формалине при комнатной температуре является
1) 1-8 часов;
2) 12-18 часов;
3) 24-48 часов;+
4) 8-12 часов.
25. Стандартным фиксатором в гистологической технике является
1) изопропиловый спирт;
2) ацетон;
3) хлороформ;
4) 10% нейтральный забуференный формалин.+
26. Формалин представляет собой раствор
1) 20% формальдегида;
2) 10% формальдегида;
3) 40% формальдегида;
4) 37% формальдегида.+
27. Химический метод фиксации происходит с помощью воздействия
1) микроволн;
2) высокой температуры;
3) низкой температуры;
4) фиксаторов.+
28. Чем диктуется выбор фиксатора?
1) разрешением хирурга;
2) способом биопсии;
3) видом ткани;
4) целью исследования.+
29. Что происходит после этапа вторичной фиксации?
1) отмывка объектов водопроводной водой;+
2) окраска структур;
3) насыщение ткани парафином;
4) обезвоживание спиртами.