1. Альфоидные зонды связываются с
1) теломерами хромосом;
2) практически всеми участками;
3) центромерными областями хромосом;+
4) определенными участками хромосом.
2. В качестве оптимального фиксатора ткани для проведения гибридизации in situ на парафиновом срезе
1) 10% нейтральный раствор формалина;+
2) 10% раствор изопропилового спирта;
3) 10% кислый раствор формалина;
4) 10% раствор уксусной кислоты;
5) 10% раствор этилового спирта.
3. Гибридизация in situ это
1) микробиологический метод;
2) цитогенетический метод;+
3) молекулярно-генетический метод;
4) иммуноморфологический метод;
5) гистологический метод.
4. Длительная фиксация в формалине затрудняет ферментативное удаление при гибридизации in situ
1) углеводов, маскирующих нуклеиновые кислоты;
2) нуклеиновых кислот;
3) жиров, маскирующих нуклеиновые кислоты;
4) белков, маскирующих нуклеиновые кислоты.+
5. Для гибридизации in situ в гистологии пригодны парафиновые срезы толщиной
1) 1–2 мкм;
2) 4–6 мкм;+
3) 14–16 мкм;
4) 12–14 мкм.
6. Для наклеивания срезов на предметные стекла в качестве адгезива для последующего проведения гибридизации in situ используют
1) альбумин;
2) крахмал;
3) поли-L-лизин;+
4) желатин.
7. Для наклеивания срезов на предметные стекла в качестве адгезива для последующего проведения гибридизации in situ используют
1) аминопропилтриэтоксисилан;+
2) желатин;
3) альбумин;
4) крахмал.
8. Для определения уровня обработки ферментом при FISH используют флюорохром
1) FITC;
2) TRITC;
3) DAPI;+
4) Texas Red.
9. Для оценки качества препаратов хромогенной гибридизации in situ используют
1) обычный световой микроскоп;+
2) флюоресцентный микроскоп;
3) электронный микроскоп;
4) конфокальный микроскоп.
10. Избыточная ферментная обработка при FISH приводит к
1) избыточной аутофлюоресценции;
2) снижению сигнала от искомого гена в некоторых клетках;
3) потере сигнала от искомого гена в некоторых клетках;+
4) гетерогенному окрашиванию DAPI.
11. К недостаткам SISH относится
1) детектировать разные сигналы можно только на разных препаратах;+
2) легко интерпретируются с помощью светового микроскопа;
3) длительное хранение препаратов;
4) визуализация структурных компонентов ткани.
12. К недостаткам CISH относится
1) легко интерпретируются с помощью светового микроскопа;
2) визуализация структурных компонентов ткани;
3) на одном препарате можно получить только 1–2 сигнала;+
4) длительное хранение препаратов.
13. Локус-специфичные зонды связываются с
1) определенными участками хромосом;+
2) центромерными областями хромосом;
3) теломерами хромосом;
4) практически всеми участками.
14. М.Л. Пардью и Д. Талла разработали метод ДНК-гибридизации в
1) 1969 году;+
2) 2016 году;
3) 1970 году;
4) 1939 году.
15. М.Л. Пардью и Д. Талла разработали метод РНК-гибридизации в
1) 2016 году;
2) 1939 году;
3) 1969 году;
4) 1970 году.+
16. Максимальная время фиксация хирургического образца для проведения гибридизации in situ на парафиновом срезе
1) не более 18 часов;
2) не более 12 часов;
3) не более 24 часов;+
4) не более 5 часов.
17. Максимальное время фиксации биоптата для проведения гибридизации in situ на парафиновом срезе
1) не более 5 часов;
2) не более 12 часов;+
3) не более 18 часов;
4) не более 24 часов.
18. Недостатки метода FISH
1) относительно простая интерпретация результатов;
2) возможность исследования генетического материала в интерфазных ядрах;
3) непродолжительное время хранения препаратов;+
4) высокая разрешающая способность.
19. Недостаточная ферментная обработка при FISH приводит к
1) избыточной аутофлюоресценции;+
2) «призрачным ядрам»;
3) нарушении морфологии ткани;
4) потери сигнала от искомого гена в некоторых клетках.
20. Плохая сохранность морфологического строения ткани при гибридизации in situ является причиной
1) недостаточное время гибридизации;
2) низкая температура протеолиза;
3) низкая температура при гибридизации;
4) недостаточное временя инкубации с субстратом;
5) некачественной фиксации.+
21. При гибридизации в ткани с осаждением серебром сигнал метки имеет
1) зеленый цвет;
2) синий цвет;
3) голубой цвет;
4) черный цвет;+
5) красный цвет.
22. При оптимальной ферментной обработке ткани во время FISH
1) сигналы от таргентных генов расположены преимущественно в центре ядра;+
2) потеря сигнала от искомого гена в некоторых клетках;
3) референсные сигналы расположены преимущественно в центре;
4) сигналы от таргентных генов расположены преимущественно около ядерной мембраны;
5) снижен сигнал от искомого гена в некоторых клетках.
23. При оптимальной ферментной обработке ткани во время FISH
1) снижен сигнал от искомого гена в некоторых клетках;
2) сигналы от таргентных генов расположены преимущественно около ядерной мембраны;
3) потеря сигнала от искомого гена в некоторых клетках;
4) референсные сигналы располагаются около ядерной мембраны;+
5) референсные сигналы расположены преимущественно в центре.
24. Причиной наличия гибридизационного сигнала в отрицательных контрольных тканях является
1) неправильно подобранное время гибридизации;
2) неправильно подобранная температура гибридизации;
3) неправильно подобранная температура денатурации;
4) неправильно подобранное время денатурации;
5) недостаточное после-гибридизационное промыванием препаратов.+
25. Причиной отлипания срезов со стекла при гибридизации in situ является
1) использование специальных сиалинизированных предметных стекол;
2) использовании специальных поли-L-лизиновых предметных стекол;
3) избыточное время воздействия протеаз;+
4) использование в качестве фиксатора 10%-ного нейтрального формалина.
26. Причиной отсутствия гибридизационного сигнала в положительных контрольных тканях является
1) использование специальных сиалинизированных предметных стекол;
2) некачественная фиксация диагностической ткани;
3) недостаточное после-гибридизационное промыванием препаратов;
4) использование специальных поли-L-лизиновых предметных стекол;
5) неправильно подобраны температуры и/или время денатурации и гибридизации.+
27. РНК в тканях практически полностью деградирует при фиксации в формалине свыше
1) 24 часов;+
2) 44 часов;
3) 34 часов;
4) 14 часов.
28. Слишком слабый гибридизационный сигнал в исследуемых препаратах возникает при
1) использовании специальных сиалинизированных предметных стекол;
2) фиксации 10%-ным нейтральным формалином в течение 16–24 часов;
3) использовании специальных поли-L-лизиновых предметных стекол;
4) низкой температуре протеолиза, денатурации, гибридизации.+
29. Слишком слабый гибридизационный сигнал в исследуемых препаратах возникает при
1) фиксации 10%-ным нейтральным формалином в течение 16–24 часов;
2) применении несоответствующей детекционной системы;+
3) использовании специальных сиалинизированных предметных стекол;
4) использовании специальных поли-L-лизиновых предметных стекол.
30. Толщина образца ткани при вырезке для гибридизации in situ
1) 8 мм;
2) 5 мм;
3) 6 мм;
4) 3 мм;+
5) 10 мм.