1. Бактериальную суспензию мутностью 0,5 McF инокулируют на агар в течение ______ минут
1) 15; +
2) 65;
3) 85;
4) 90.
2. В агар Мюллера-Хинтона для привередливых бактерий (МХА-П) стерильно добавляют
1) дефибринированную лошадиную кровь; +
2) дефибринированную кровь человека;
3) плазму кроличью цитратную;
4) сыворотку лошадиную нормальную.
3. Готовую среду агара Мюллера-Хинтона хранят при температуре, °C
1) 8-10; +
2) 2-4;
3) 4-6;
4) 5-8.
4. Дефибринированную лошадиную кровь в агар Мюллера-Хинтона для привередливых бактерий (МХА-П) добавляют в количестве (из расчета на 1 литр питательной среды), мл
1) 50; +
2) 10;
3) 100;
4) 150.
5. Диаметр зоны подавления роста вокруг бумажного диска оценивают в
1) миллиметрах; +
2) метрах;
3) нанометрах;
4) сантиметрах.
6. Диски с антибиотиками на инокулированный агар наносят
1) пинцетом, обожженным в пламени спиртовки; +
2) ножницами с закругленными браншами;
3) пластиковой пипеткой Пастера;
4) стерильной бактериологической петлей.
7. Для измерения плотности инокулята предпочтительно использовать
1) фотометрические устройства; +
2) аналитические весы;
3) масс-спектрометр;
4) рН-метр.
8. Для приготовления инокулята используют метод
1) прямого суспендирования в стерильном изотоническом растворе; +
2) микроразведения в бульоне;
3) посева на плотные среды шпателем Дригальского;
4) секторных посевов стерильной бактериологической петлей.
9. Инокулят готовят из микробной культуры, выросшей на неселективном агаре в течение _____ часов
1) 16-20; +
2) 20-24;
3) 44-48;
4) 8-10.
10. Исследованию по оценке антибиотикочувствительности подлежат
1) материал изолированных колоний; +
2) чистые культуры микроорганизмов; +
3) домашние животные;
4) образец клинического материала;
5) поврежденные кожные покровы.
11. Каплевидная зона подавления роста образуется при использовании
1) Е-тестов; +
2) дисков с антибиотиками;
3) мембранных фильтров;
4) фильтровальной бумаги.
12. Максимальное количество дисков на одной чашке Петри диаметром 90 мм, не более _______ шт
1) 6; +
2) 10;
3) 12;
4) 8.
13. Методы определения чувствительности, основанные на диффузии антимикробного препарата из носителя в плотную питательную среду
1) Е-тест; +
2) диско-диффузионный; +
3) серийных микроразведений;
4) серийных разведений в агаре;
5) серийных разведений в бульоне.
14. Ограничения диско-диффузионного метода
1) используется преимущественно для быстро растущих бактерий; +
2) автоматизация этапа учета и интерпретации результатов;
3) имеет относительно низкую стоимость;
4) является универсальным для широкого круга антимикробных препаратов.
15. Основная цель оценки (определения) чувствительности микроорганизмов к антимикробным агентам (препаратам)
1) прогнозирование эффективности антимикробных препаратов при лечении инфекций у конкретных пациентов; +
2) выявление резистентности микроорганизма к конкретному антибактериальному препарату;
3) оценка клинической значимости микроорганизма, выделенного от конкретного пациента;
4) первичный посев образца клинического материала на питательные среды.
16. Основной количественный показатель, характеризующий микробиологическую активность антимикробного препарата
1) минимальная подавляющая концентрация; +
2) единица действия на единицу объема;
3) колониеобразующая единица;
4) средняя летальная доза.
17. Питательная среда для микроорганизмов с обычными питательными потребностями в соответствии с Клиническими рекомендациями "Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам", 2014
1) агар Мюллера-Хинтона; +
2) Haemophilus Test Medium;
3) агар Мюллера-Хинтона с добавлением 5% бараньей крови;
4) мясо-пептонный агар.
18. Питательная среда для определения чувствительности Haemophilus infuenzae в соответствии с МУК 4.2.1890-04
1) Haemophilus Test Medium; +
2) агар Мюллера-Хинтона;
3) изосенситест;
4) среда АГВ.
19. По стандарту мутности МакФарланда приготовленный инокулят имеет плотность
1) 0,5; +
2) 0,3;
3) 0,7;
4) 1,0.
20. Поверхность агара Мюллера-Хинтона перед использованием должна быть
1) сухой; +
2) белой;
3) влажной;
4) матовой.
21. После инокуляции агара диски наносят в течение _____ минут
1) 15; +
2) 65;
3) 85;
4) 90.
22. После нанесения дисков с антибиотиками инкубацию чашек начинают не позже ______минут
1) 15; +
2) 60;
3) 75;
4) 90.
23. Преимущества диско-диффузионного метода
1) не требует использования специального оборудования; +
2) имеет высокую стоимость;
3) необходим строгий контроль качества;
4) требует использования специального оборудования.
24. При толщине слоя агара Мюллера-Хинтона в чашке Петри более 4,0 мм диаметр зоны подавления роста
1) уменьшается; +
2) не изменяется;
3) отсутствует;
4) увеличивается.
25. При толщине слоя агара Мюллера-Хинтона в чашке Петри менее 3,5 мм диаметр зоны подавления роста
1) увеличивается; +
2) не изменяется;
3) отсутствует;
4) уменьшается.
26. Современные стандартизованные методы определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам
1) диффузионные; +
2) биологические;
3) микроскопические;
4) рентгенологические.
27. Толщина агара Мюллера-Хинтона в чашке составляет, мм
1) 4,0 + 0,5; +
2) 3,0 + 1,0;
3) 3,5 + 0,5;
4) 4,5 + 0,5.
28. Условия инкубирования чашек с агаром Мюллера-Хинтона
1) температура (35 + 1) °С; обычная атмосфера; +
2) температура (35 + 1) °С; 4-6% СО2;
3) температура (37 + 1) °С; 4-6% СО2;
4) температура (37 + 1) °С; обычная атмосфера.
29. Условия инкубирования чашек с агаром Мюллера-Хинтона для привередливых микроорганизмов
1) температура (35 + 1) °С; 4-6% СО2; +
2) температура (35 + 1) °С; обычная атмосфера;
3) температура (37 + 1) °С; 4-6% СО2;
4) температура (37 + 1) °С; обычная атмосфера.
30. Чашки Петри с МХА и МХА-П подсушивают при температуре плюс 35°С в течение _____ минут
1) 15; +
2) 20;
3) 30;
4) 60.