1. Аналитический этап для иммуногистохимического исследования
1) демаскировка антигена; +
2) декальцинация;
3) архивирование;
4) проводка.
2. В рабочую группу контроля качества не входит
1) биолог;
2) заведующий патологоанатомическим отделением; +
3) ответственный врач-патологоанатом, имеющий специальные знания по контролю качества;
4) биолог;
5) старший лаборант.
3. В результате иммуногистохимического окрашивания затруднительно отличить истинный сигнал от сильного фонового окрашивания, наблюдаются перекрестные реакции или оценка статуса затруднена из-за иных артефактов, возникших в связи с некачественным окрашиванием, оценивается как
1) плохо;
2) оптимально;
3) погранично; +
4) хорошо.
4. В результате иммуногистохимического окрашивания наблюдаются ложноположительные и/или ложноотрицательные реакции хотя бы в одном образце ткани и оценивается
1) оптимально;
2) плохо; +
3) погранично;
4) хорошо.
5. В результате иммуногистохимического окрашивания полное отсутствие недостатков и имеются соответствия принятым в мире стандартам «идеального окрашивания», оценивается как
1) хорошо;
2) погранично;
3) плохо;
4) оптимально. +
6. В случае невозможности включить в позитивный контроль ткани с разной интенсивностью, стоит выбрать образец ткани
1) со слабой интенсивностью окрашивания;
2) с умеренной интенсивностью окрашивания; +
3) с выраженной интенсивностью окрашивания;
4) с отсутствием окрашивания.
7. В срезах после окрашивания все клетки имеют интенсивный синий цвет в результате
1) низкой концентрации антител при разведении концентрата;
2) недостаточного времени докрашивания гематоксилином;
3) неподавленной активности эндогенной пероксидазы;
4) длительного докрашивания гематоксилином. +
8. В срезах после окрашивания все клетки имеют интенсивный синий цвет в результате
1) недостаточного времени докрашивания гематоксилином;
2) низкой концентрации антител при разведении концентрата;
3) неподавленной активности эндогенной пероксидазы;
4) слишком высокой концентрации докрашивающего раствора. +
9. В срезе отмечается отпадение тканей в результате
1) недостаточной фиксации; +
2) несовместимости буфера для маскировки;
3) короткого времени демаскировки;
4) длительного использования буфера для демаскировки.
10. В срезе отмечается отпадение тканей в результате
1) несовместимости буфера для маскировки;
2) длительного использования буфера для демаскировки;
3) короткого времени демаскировки;
4) использования интенсивного протокола демаскировки. +
11. В срезе отсутствие, неравномерное, неспецифическое фоновое или ослабленное окрашивание в тканях пациента при наличии-клеток мишеней и адекватном окрашивании в позитивных контрольных тканях, возникает в результате
1) недостаточной фиксации; +
2) несовместимости буфера для демаскировки;
3) короткого времени окрашивания;
4) низкая концентрации антител.
12. Внутренний контроль качества регламентируется приказом МЗ РФ от 31.07.2020 г. №
1) №785н; +
2) №207н;
3) №174н;
4) №587н.
13. Диффузное фоновое окрашивание тканей пациента и контрольных тканей с перекрашиванием позитивных клеток-мишеней возникает в результате
1) длительной фиксации ткани пациента;
2) низкой концентрации антител при разведении концентрата;
3) короткой фиксации ткани пациента;
4) высокой концентрации антител при разведении концентрата. +
14. Для контроля качества растворов для окраски, красителей и химикатов ведется
1) журнал учета реагентов и химикатов; +
2) технологическая карта;
3) журнал смены реагентов в гистопроцессоре;
4) журнал смены реагентов в гистостейнере.
15. Избыточное фоновое окрашивание хромогеном контрольных тканей и тканей пациента или только тканей пациента возникает в результате
1) несовместимости субстрат-хромоген;
2) длительной докрашивания гематоксилином;
3) низкой концентрация антител при разведении концентрата;
4) неподавленной активности эндогенной пероксидазы. +
16. Избыточное фоновое окрашивание хромогеном контрольных тканей и тканей пациента или только тканей пациента возникает в результате
1) несовместимости субстрат-хромогена;
2) избыточной инкубации субстрат-хромогена; +
3) низкой концентрации антител при разведении концентрата;
4) длительного докрашивания гематоксилином.
17. Изготовление библиотек предметных стекол с нанесенными контрольными тканями позволит
1) повысить учет постановки ИГХ-реакций;
2) сократить время работы;
3) не допустить постановки ИГХ-реакции с неправильной контрольной тканью; +
4) повысить ответственность гистотехника.
18. К отлетанию среза от покровного стекла может привести все, кроме
1) интенсивного протокола демаскировки;
2) низкой концентрации антител при разведении концентрата; +
3) недостаточной фиксации;
4) нарушения работы с водяной бани во время микротомии.
19. Контрольные мультиблоки изготавливаются на основе технологии
1) гуанидинтиоцианат-фенол-хлороформной экстракции;
2) тканевых матриц; +
3) сорбции на силикагеле;
4) фенол-хлороформной экстракции.
20. На микропробирке рабочего раствора указывают все, кроме
1) порядкового номера;
2) даты разведения;
3) титра антитела;
4) названия антитела;
5) ФИО приготовившего разведение. +
21. Не следует хранить заранее изготовленные контрольные срезы
1) более 10 дней; +
2) более 20 дней;
3) более 15 дней;
4) более 25 дней.
22. Негативные контрольные ткани позволяют оценить
1) правильность выявления эпитопа;
2) специфичность;
3) соблюдение техники окрашивания;
4) чувствительность протокола окрашивания.
23. Неравномерное окрашивание тканей пациента с наличием клеток-мишеней при нормальном окрашивании позитивной контрольной ткани возникает в результате
1) несовместимости буфера для демаскировки;
2) короткого времени окрашивания;
3) большой толщины кусочка при вырезке; +
4) низкая концентрации антител.
24. Неспособность частей среза окрашиваться антителами или докрасками возникает в результате
1) неполного депарафинирования; +
2) несовместимости буфера для демаскировки;
3) длительной окраски гематоксилином;
4) короткого времени инкубации первичного антитела.
25. Оптимальная толщина ткани, наиболее подходящая под блоки-доноры
1) 5–6 мм;
2) 3–4 мм; +
3) 1–2 мм;
4) 7–8 мм.
26. Ответственным лицом за организацию и контроль качества иммуногистохимических исследований является
1) старший лаборант;
2) заведующий патологоанатомическим отделением; +
3) ответственный врач-патологоанатом, имеющий специальные знания по контролю качества;
4) биолог.
27. Отсутствие окрашивания в позитивной контрольной ткани и ткани пациента при наличии клеток-мишеней в результате
1) несовместимости буфера для демаскировки; +
2) длительной докраски гематоксилином;
3) длительной фиксации ткани в формалине;
4) короткой фиксации.
28. Отсутствие окрашивания или слабое окрашивание в контрольных тканях и тканях пациента при наличии клеток-мишеней в результате
1) короткого времени фиксации тканей пациента;
2) избыточной инкубации субстрат-хромоген;
3) неподавленной активности эндогенной пероксидазы;
4) избыточной сушки после монтирования срезов. +
29. Отсутствие окрашивания тканей пациента при наличии клеток-мишеней и позитивных контрольных тканей возникает в результате
1) избыточной фиксации тканей пациента;
2) высыхания среза во время окрашивания; +
3) избыточной инкубации субстрат-хромоген;
4) неподавленной активности эндогенной пероксидазы.
30. Отсутствие окрашивания тканей пациента при наличии клеток-мишеней и позитивных контрольных тканей возникает в результате
1) избыточной инкубации субстрат-хромогена;
2) неподавленной активности эндогенной пероксидазы;
3) несовместимости субстрат-хромогена; +
4) избыточной фиксацией тканей пациента.
31. Оценить аналитическую чувствительность иммуногистохимического окрашивания способны
1) клетки с низким уровнем экспрессии; +
2) клетки со средним уровнем экспрессии;
3) клетки с отсутствием экспрессии;
4) клетки с высоким уровнем экспрессии.
32. Постаналитический этап для иммуногистохимического исследования
1) демаскировка антигена;
2) архивирование; +
3) проводка;
4) декальцинация.
33. Постналитическим этапом для иммуногистохимического исследования является
1) формирование заключения; +
2) демаскировка;
3) первичная инкубация антител;
4) заключение в парафин.
34. Преаналитический этап для иммуногистохимического исследования
1) демаскировка антигена;
2) выбор первичного антитела;
3) архивирование;
4) проводка. +
35. Преаналитическим этапом для иммуногистохимического исследования является
1) первичная инкубация антител;
2) формирование заключения;
3) заключение в парафин; +
4) демаскировка.
36. Результат иммуногистохимического окрашивания имеет ряд недостатков, не мешающих правильной постановке диагноза, оценивается как
1) хорошо; +
2) плохо;
3) оптимально;
4) погранично.
37. Рекомендуется исправление протокола окрашивания и повторная валидация при оценке
1) отлично;
2) оптимально;
3) хорошо;
4) погранично. +
38. Рекомендуется исправление протокола окрашивания и повторная валидация при оценке
1) хорошо;
2) отлично;
3) оптимально;
4) плохо. +
39. Слабое окрашивание тканей пациента при наличии клеток-мишеней и позитивных контрольных тканей возникает в результате
1) низкой концентрации антител при разведении концентрата; +
2) большой толщины кусочка при вырезке;
3) короткой фиксации ткани пациента;
4) длительной фиксации ткани пациента в формалине.
40. Учет контрольных мультиблоков осуществляется с помощью
1) журнала учета реагентов и химикатов;
2) журнала смены реагентов в гистопроцессоре;
3) журнала смены реагентов в гистостейнере;
4) журнала по изготовлению мультиблоков. +
41. Функциональные обязанности рабочей группы по контролю качества
1) контроль уровня реагентов в емкостях стейнера для окрашивания;
2) смена реагентов по утвержденному графику в СОПе;
3) организация закупки реагентов;
4) контроль и участие в валидации протоколов иммуногистохимических окрашиваний при смене партии реагентов, поступивших в отделение, при применении разных клонов одного и того же антитела. +
42. Функциональные обязанности рабочей группы по контролю качества
1) организация закупки реагентов;
2) контроль уровня реагентов в емкостях стейнера для окрашивания;
3) разработка и ведение журналов внутрилабораторного контроля качества иммуногистохимических окрашиваний; +
4) смена реагентов по утвержденному графику в СОПе.
43. Функциональные обязанности рабочей группы по контролю качества
1) смена реагентов по утвержденному графику в СОПе;
2) организация закупки реагентов;
3) разбор выявленных нарушений, дополнительное обучение сотрудников внутри отделения; +
4) контроль уровня реагентов в емкостях стейнера для окрашивания.
44. Функциональные обязанности рабочей группы по контролю качества
1) постоянное совершенствование и внедрение новых СОП при изменениях в технологических процессах при выполнении иммуногистохимических исследований; +
2) организация закупки реагентов;
3) контроль уровня реагентов в емкостях стейнера для окрашивания;
4) смена реагентов по утвержденному графику в СОП.
45. Ядерно-цитоплазматическую локализацию (окрашивание) имеет
1) белок S100; +
2) коллаген IV типа;
3) белок СD45;
4) белок GCDFP15.